Biologisk mikroskopi på volumen af blokke af vævsprøver
Indtil videre er kryofixering, frosne ultratynde snit og frysetørring rutinemetoder til røntgenmikroskopi af væv og celler. Angiv følgende detaljer om denne metode:
Et biologisk mikroskop med et rampelys kan bevæge rampelyset op og ned for at opnå moderat lysstyrke, og åbningen af den variable åbning kan også ændres for at opnå moderat lysstyrke. Hvis lyset er fra solen, kan rampelyset hæves korrekt, og åbningen af variabelt lys kan forstørres korrekt. Hvis lyset er for stærkt, kan rampelyset sænkes korrekt, og krydsets åbning kan reduceres korrekt. Hvis du stadig føler dig blændende i denne situation, kan du vælge at placere et passende filter på beslaget under rampelyset. Denne eg kan opnå en lysstyrke, der tilfredsstiller dig. Justering af rampelysets øvre og nedre positioner kan naturligvis ændre åbningsstørrelsen af lyslæsningen og vælge passende filtre, hvilket kræver en bestemt periode med praksis og erfaring.
Et meget vigtigt problem i biologisk mikroskopi er processen med prøveudtagning og isoleringsceller. Efter frysetørring og harpiksindlejring (FD) skal de frosne ultratynde sektioner behandles omhyggeligt for at sikre, at det 65 elementindhold i hver del ikke er beskadiget under observation og analyse. På grund af de mange trin og høje omkostninger, der er involveret i røntgenmikroanalyse, er det beklageligt at drage forkerte konklusioner, hvis de analyserede celler er beskadiget eller døde efter langvarig og multi-trinsbehandling. De myokardiale celler adskilt ved gelatinasebehandling har to former, den ene er lang stangformet og den anden er cirkulær. Sidstnævnte henviser til døende celler, der er beskadiget under processen med celleseparation.
Indholdet og fordelingen af elektrolytter i disse to typer celler er meget forskellige under et biologisk mikroskop. Na er meget høj, og K er ekstremt lavt i cirkulære kardiomyocytter, og koncentrationen af Ca i lineære dendritter er meget høj. Efter verifikation med andre analysemetoder er det bevist, at den høje Na og Low K i cirkulære celler og den høje CA i mitokondrier er resultatet af membranskade under celleseparation. Den kolde fikseringsmetode for celler og væv involverer ofte første slukning og opbevaring af dem i flydende nitrogen. Slukning af fiksering er afgørende for konserveringseffekten. Levende celler eller friske væv er rige på vand, og når de slukkes, fryses de dele af cellerne eller vævene, der kommer i direkte kontakt med kølemediet (især, når man bruger flydende nitrogen til afkøling), ofte først og fastgøres, og danner en "skal", der forhindrer den centrale del af cellerne fra at blive knuset og fast. Derfor, når man udfører røntgenmikroanalyse, konstateres det ofte, at iskrystaller findes i den centrale del af større celler. For at forhindre, at denne situation sker, bruges et stof med et smeltepunkt, der er højere end flydende nitrogen, men lavere med 806C som kølemiddel. Der er mange af disse stoffer, men de er lette at opnå, og den mest overkommelige er koncentreret propan (kogepunkt 42.120c, smeltepunkt 187.10c, molekylvægt 44.1), som også har en hurtig kølingshastighed. Men dens ulempe er, at det er brandfarligt.
