Fremgangsmåde til fremstilling af objektglas
Der er tre metoder til fremstilling af objektglas:
1. Smøremetode
Smøremetode er en tilberedningsmetode, hvor materialet fordeles jævnt på objektglasset.
Udstrygningsmaterialer omfatter encellede organismer, små alger, blod, bakteriekulturer, løst væv fra planter og dyr, sædreder, støvknapper osv.
Vær opmærksom ved udtværing:
(1) Rutsjebanen skal være ren.
(2) Sliden skal holdes flad.
3) Belægningen skal være ensartet. Påfør dråben af belægningsvæske til højre for midten af objektglasset og fordel det godt med bladet på en dissektionskniv eller en tandstikker osv.
4) Belægningen skal være tynd. Brug et andet objektglas som en pusher, skub forsigtigt fra højre mod venstre langs overfladen af objektglasset med dråben af påføringsopløsning (vinklen mellem de to objektglas skal være 30 grader til 45 grader), og påfør et ensartet tyndt lag.
5) Fiksering. Hvis fiksering er nødvendig, skal du bruge kemisk fikseringsmiddel eller udtørrende (bakteriel) fiksering.
6) Farvning. Brug methylenblåt til bakterier og Rachels farve til blod. Farvningsopløsningen skal dække hele den belagte overflade.
7) Skyl. Opsuges på sugende papir eller bages tørt.
8) Forsegl filmen. Til langtidsopbevaring skal du bruge canadisk træfilm.
2. Filmpresningsmetode
Trykfilmmetoden er det biologiske materiale, der placeres mellem objektglasset og dækpladen, ved at anvende et vist tryk, vil vævscellerne blive presset fra hinanden en fremstillingsmetode.
(1) tage materiale. Observation af celledeling, celledeling bør vælges sprudlende, friske vævsceller som materialer. Såsom rodspidser, meristematisk væv i stammespidsen, knoglemarvsceller, støvknapper (pollenmoderceller). Sperm rede (spermatogonia) og så videre.
(2) Fiksering. Materiale fiksering kan bestemmes efter behov, umiddelbart efter at have taget materiale tryk film observation, kan ikke lave en separat fast behandling (og farvning synkron); tage materialet er ikke umiddelbart efter inspektionen, materialet kan fikseres med et fikseringsmiddel (generelt med alkohol acetat fiksativ). Fastsat 2 ~ 24 timer (afhængig af materialet) efter vask med 95% ethanol, konserveret i 70% ethanol, standby.
(3) Dissociation. Cellerne er ikke lette at sprede materialet med hydrolyseseparationsopløsning (såsom 1N HCl eller saltsyre en alkoholopløsning) behandling, generel behandling 6 ~ 20min, efter dissociation og skylning med vand før farvning.
(4) Farvning. Der er mange slags pletter. Observation af kromosomer bruges almindeligvis til at farve med magentaacetat-farvningsopløsning.
(5) Filmpresning. Læg materialet på et objektglas, tilsæt en dråbe vand eller farveopløsning, dæk dækglasset og tryk forsigtigt på objektglasset med tommelfingeren.
(6) Observation. Efter at have presset filmen kan den observeres under mikroskopet.
