Volumenet af vævsblokke i forhold til biologiske mikroskoper
Et biologisk mikroskop med en spotlight kan flytte spotlighten op og ned for at opnå moderat lysstyrke, og blænden på den variable blænde kan også ændres for at opnå moderat lysstyrke. Hvis lyset er fra solen, kan spotlyset hæves passende, og blænden på det variable lys kan forstørres passende. Hvis lyset er for stærkt, kan spotlyset sænkes passende, og skæringsåbningen kan reduceres passende. Hvis du stadig føler dig blændende i denne situation, kan du vælge at placere et passende filter på beslaget under spotlyset. Denne eg kan opnå en lysstyrke, der tilfredsstiller dig. Selvfølgelig kan justering af de øvre og nedre positioner af spotlyset ændre blændestørrelsen på lysaflæsningen og vælge passende filtre, hvilket kræver en vis periode med øvelse og erfaring.
Et meget vigtigt emne i biologisk mikroskopi er processen med prøveudtagning og isolering af celler. Efter fryse-tørring og harpiksindlejring (FD) skal de frosne ultra-tynde sektioner behandles omhyggeligt for at sikre, at indholdet på 65 elementer i hver del ikke beskadiges under observation og analyse. På grund af de mange trin og høje omkostninger forbundet med røntgenmikroanalyse, er det beklageligt at drage forkerte konklusioner, hvis de analyserede celler er beskadigede eller døde efter langvarig og fler-behandlingsproces. Myokardiecellerne adskilt ved gelatinasebehandling har to former, den ene er lang stav-formet og den anden er cirkulær. Sidstnævnte refererer til døende celler, der bliver beskadiget under processen med celleadskillelse.
Indholdet og fordelingen af elektrolytter i disse to typer celler er meget forskellige under et biologisk mikroskop. Na er meget højt, og K er ekstremt lavt i cirkulære kardiomyocytter, og koncentrationen af Ca i lineære dendritter er meget høj. Efter verifikation med andre analytiske metoder er det blevet bevist, at det høje Na og det lave K i cirkulære celler og det høje Ca i mitokondrier er resultatet af membranskade under celleadskillelse. Koldfikseringsmetoden for celler og væv involverer ofte først quenching og derefter opbevaring af dem i flydende nitrogen. Slukningsfiksering er afgørende for konserveringseffekten. Levende celler eller friske væv er rige på vand, og når de slukkes, bliver de dele af cellerne eller vævene, der kommer i direkte kontakt med kølemidlet (især når man bruger flydende nitrogen til afkøling), ofte frosset og fikseret først, og danner en "skal", der forhindrer den centrale del af cellerne i at blive knust og fikseret. Når man udfører røntgenmikroanalyse, finder man derfor ofte ud af, at der findes iskrystaller i den centrale del af større celler. For at forhindre denne situation i at ske, bruges et stof med et smeltepunkt, der er højere end flydende nitrogen, men lavere med 806c, som kølemiddel. Der er mange af disse stoffer, men det lettest tilgængelige og billige er koncentreret propan (kogepunkt 42,120c, smeltepunkt 187,10c, molekylvægt 44,1), som også har en hurtig afkølingshastighed. Men dens ulempe er, at den er brandfarlig.
